Vajad kellegagi rääkida?
Küsi julgelt abi LasteAbi
Logi sisse

Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule (0)

5 VÄGA HEA
Punktid

Tallinnatehnika Ülikool
Biotehnoloogia õppetool
Laboratoorse töö nimetus:
Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule
Üliõpilased:
Õppejõud:
Tiina Randla
Õpperühm:
Kuupäaev:
08.11.2010
Tallinn 2010
I töö: Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule
Sissejuhatus
Keskkonnatingimustest sõltub mikroorganismide kasvukiiris ja samuti ka fermentatiivsed omadused, näiteks tenperatuurist, happesusest, erinevate ühendite sisaldusest keskkonnas, aeratsioonitingimustes.
Tegelikult, enamus tüvesid soovib neutraalset keskkonda kasvamiseks ja temperatuurivahemiku liigikaudu 20-45C, selleseid mikroorganisme nimetatakse mesofiilideks. Olemas ka teised mikroorganismid , leidub neid kuumaveeallikates ja jäälistikel. Madalatel temperatuuridelkasvavad nn psühofiilsed ja kõrgetel temperatuuridel kasvavad termofiilsed mikroorganismid. Äärmusliku happelisi tingimusi armastanad atsidofiilid, leelislemblilisi alkalofiilid.
On oluliseks teguriks ka õhuhapniku vajadus või mitte. Mikroorganismid siis jagatakse elutegevuseks ja paljunemiseks õhuhapniku vajavateks aeroobideks ja vaba hapniku (madala redokspotentsiaaliga) mittevajavateks anaeroobideks.
Obligaatsed aeroobid ei saa molekulaarse hapnikuta elada. Fakultatiivsed aeroobid võivad ajuti elada ka hapnikuta keskkonnas. Anaeroobide hulgas eristatakse samuti obligaatseid ja fakultatiivseid anaeroobe. Obligaatsete anaeroobide hulgas leidub mikroaerofiile (võivad kasvada ka vähesel määral hapnikku sisaldavas keskkonnas) ning aerotolerante (taluvad lühikest aega hapniku juurdepääsu, kuid ei kasva sel juhul).
Mitmesugused keemilised ühendid, nagu näiteks antibiootikumid , keskkonnamürgid, konserveerivad ning desinfitseerivad ained mõjuvad enamusele mikroorganismidest toksiliselt, samas aga leidub tüvesid, mis kohastumusena keskkonnatingimuste suhtes on kas lihtsalt muutunud vastava ühendi suhtes tundetuks või neil on välja kujunenud metaboolsed rajad , mis võimaldavad selliseid ühendeid lagundada.
Ühendi toime mikroorganismile sõltub olulisel määral tema kontsentratsioonist. Näiteks võivad keedusool ning suhkrud vajalike toitainete (mineraalained, energeetiline tooraine ) allikatena väikestes kogustes mikroorganismide kasvu soodustada või olla selleks lausa hädavajalikud, suuremate kontsentratsioonide puhul aga hakkab toimima osmoos ja mikroorganismid hukkuvad ning seega nimetatud ühendid käituvad konservantidena.
Töö eesmärk: erinevate söötmetega tutvumine , värvimine Grami järgi ja mikroskopeeromine, mikroorganismide kasvukiiruse sõltuvuse uurimine
temperatuurist, keskkonna pH-st ning keedusoola , suhkru, ksenobiootikumide sisaldusest keskkonnas
Kasutatavad materjalid: 3 tardsöötmel ettekasvatatud mikroobikultuuri (Baccillus, Rhodococcus, veinipärm); glükoosi (0%, 20%, 40%), vesinikioonide (pH 5, 7, 9) ja soola NaCl (0%, 10%, 20%) erinevate kontsentratsioonidega katseklaasid; PCA ja MALT söötmed Petri tassidel ilma ja koos ksenobiootikumidega
Töövahendid: katseklaasid, vahendid värvimiseks ja mikroskopeerimiseks
Töö käik:
Etapp1. Mikroskopeerimine:
(uurimine vastavalt Biotehnoloogia laboratoorsete tööde juhendile ehk lisa 2 või Mikrobioloogia juhendile lk 36, lühiskeem toodud antud juhendi lisas )
  • uuritavatest mikroorganismidest valmistatakse preparaadid , kusjuures kuumfikseeritud - bakterite jaoks ja märgpreparaat pärmi jaoks
  • värvitakse Grami järgi, kasutades võrdluskultuuridena Sarcina (G+) ja E. coli (G-).

Vaatlustulemused tabelis 1.
Uuritav kultuur
Märkus
Pilt
Saccharomyces cerevisiae
Üksikud, väikesed, tunktikesed
Pseudomonas sppruun
Gram –negatiivsed kepikesed , roosa värvusega
Staphylococcus sp
Gram-positiivsed kepikujulised, violetne värvus
Echerihia coli
Gram–negatiivsed kepikesed, roosa värvusega
Sarcina sp.
Gram – positiivsed kooslusi moodustavad
Bakterid või kokid violetse värvusega
Etapp2. Mikroorganismide kasvukiiruse sõltuvuse uurimine
  • temperatuurist:
    • võetakse tardsöötmetel eelkasvatatud organisme ehk 2 bakterit ja pärmi
    • tehakse väljakülvid joonkülvi meetodil, jälgides järgmise skeemi

    Bakterid : 4 tassi PCA-söötmega
    Pärm: 4 tassi Malt agariga.
    • inkubeeritakse järgmistel temperatuuridel: külmutuskapis +5 ºC,

    toatemperatuuril +18 – 22 ºC;
    termostaadis +35 ºC ja
    termostaadis +50 ºC.
    • iga 48 järel märgitakse üles tassidel toimunud muutused

    Saccharomyces cerevisiae
    Pseudomonas sp „pruun
    Staphylococcus sp
    +5C
    +20C
    +35C
    +50C
    +5 C
    +20C
    +35C
    +50C
    Külvi skeem
  • keskkonna pH-st ehk pH optimumi määramine
    • 3 erineva pH-ga söödet (5, 7 , 9) ja iga on 3 erineva katseklaasi (kokku 9 katseklaasi)
    • igast kultuurist tehakse 3 külvi vedelsöötmesse, viies steriilse külviaasaga veidi biomass katseklaasi, jälgides järgmise skeemi
    • kasvatatakse toatemperatuuril

    Saccharomyces cerevisiae Pseudomonas sp „pruun Staphylococcus sp
    • iga 48 tundi järel märgitakse üles katseklaasides toimunud muutused
    • 3 nädala pärast viimasel vaatlusel mõõdetakse lahuste optilised tihedused lainepikkusel 540 nm

  • soola ja suhkru kontsentratsioonist:
    • 3 söödet erineva NaCl sisaldusega (0, 10 ja 20%) ja 3 söödet erineva glükoosi kontsentratsiooniga (0, 20 ja 40%) á 3 katseklaasi - kokku 18 katseklaasi.
    • igast kultuurist tehakse 3 külvi erineva soola sisaldusega söötmesse ning samuti 3 külvi erineva suhkru kontsentratsiooniga (soola kontsentratsiooniga) söötmesse
    • külve inkubeeritakse toatemperatuuril
    • iga 48 tundi järel vaadetakse toimunud muutusi katsekklaasides
    • viimasel vaatlusel 3 nädala pärast mõõtsime optilised tihedused lainepikkusel 540 nm.

  • keskkonnavõõrastest ainetest
    • söötmed lisanditega:

    Pärmile: Malt agar + fenool ning Malt agar + kütteõli
    Bakteritele: PCA + fenool ja PCA + kütteõli
    • võetakse tardsöötmetel eelkasvatatud organisme ehk 2 bakterit ja pärmi
    • tehakse väljakülvid joonkülvi meetodil järgmise skeemi järgi:

    Saccharomyces cerevisiae Pseudomonas sp „pruun Staphylococcus sp
    • iga 48 järel märgitakse üles tassidel toimunud muutused
    • hinnasime neid 5-palli süsteemis, kusjuures

    0 – kasvu puudumine
    1 – väga nõrk kasv
    2 – mõõdukas kasv
    3 – tugev kasv
    4 – väga tugev kasv (tassi kattev kultuur).
    Katse tulemused
    Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule
    Uuritav faktor
    Staphylococcus sp
    Pseudomonas sp „pruun
    Saccharomyces cerevisiae
    I vaatl. II vaatl. Lõppv.
    I vaatl. II vaatl. Lõppv.
    I vaatl. II vaatl. Lõppv.
    1. T
    Hinne pallides (0–5)
    +5o C
     2

    2
    1
    2
    1

    3
    2
    +20o C
    3
    3
    2
    3
    3
    2
    3
    4
    1
    +35o C
    3
    2
    0
    1
    1
    0
    4
    3
    2
    +50o C
    0
    0
     0
    0
    0
    0
    0
    0
    0
    2. pH
    Hinne pallides (0–5) ja D =540 nm (lõppvaatlusel)
    5
    3
    3
    1

    3
    1
    1
    2
    1
    7
    2
    4
    1
    3
    3
    1
    1
    2
    1
    9
    1
    4
    1
    3
    4
    1
    2
    2
    1
    3 NaCl
    Hinne pallides (0–5) ja D =540 nm (lõppvaatlusel)
    0%
    2
    3
    1
    1
    2
    1
    1
    2
    0
    10%
    3
    2
    0
    0
    1
    0
    1
    3
    1
    20%
    1
    1
    0
    0
    0
    0
    1
    1
    0
    3 Glc
    Hinne pallides (0–5) ja D =540 nm (lõppvaatlusel)
    0%
    2
    4
    1
    2
    4
    0
    1
    2
    1
    20%
    1
    2
    0
    0
    1
    0
    3
    4
    2
    40%
    0
    1
    0
    0
    0
    0
    3
    3
    1
    4.Ks.-d
    Hinne pallides (0–5)
    Fenool
    2
    2
    0
    1
    0
    0
    2
    1
    0
    Kütteõli
    2
    3
    1
    4
    4
    2
    2
    2
    1
    Optiline tihedus
    Optiline Tihedus
     
    Staphylococcus sp
    Pseudomonas sp „pruun „
    Saccharomyces cerevisiae
    pH
     
     
     
    5
    0.601
    0.935
    0.426
    7
    0.845
    0.948
    0.635
    9
    0.503
    0.783
    0.511
    sool, %
     
     
     
    0
    0.533
    0.660
    0.445
    10
    0.250
    0.060
    0.622
    20
    0.099
    0.037
    0.264
    suhkur,%
     
     
     
    0
    0.454
    0.755
    0.599
    20
    0.329
    0.077
    0.840
    40
    0.076
    0.062
    1.041
    Järeldused:
    Soola ja suhkrusisaldus:
    Etteantud või uuritavad preparaadid on madala soola- ja suhkrusisalduse taluvusega. Mida suurem kontsentratsioon, seda väiksem optiline tihedus. Seda tõestavad ka järgmised graafikud
    Tulemuste järgi võib öelda, et antud mikroorganismide vahel ei ole halofiile. Kuid ikka iga mikroorganismi tüve talub soola sisaldust erinevalt.
    Pseudomonas sp „pruun „ kasv oli eriti intensiivne, kui sööde ei sisalda NaCl. Mida suurem NaCl kontsentratsioon söödel, seda väiksem Rhodococcuse kasv. Ehhki Pseudomonas sp „pruun „ võib areneda soolases keskkonnas.
    Pseudomonase kasv oli eriti intensiivne ilma soolata ja soola juuresolekul bakteri kasvu üldse ei ole.
    Saccharomyces cerevisiae kõige parem talub soola sisaldust bakterite võrreledes. Kuid tema kõige intensiivne kasv oli soolasisaldusega 10%. Võib ka öelda, et soola kontsentratsiooni suurendades pärmi kasv väheneb.
    Tulemuste järgi võib öelda, et antud iga mikroorganismi tüve talub glükoosi sisaldust erinevalt.
    Kõige intensiivne kasv mikroorganismide vahel oli Saccharomyces cerevisiae , eriti intensiivselt ta kasvas sukrusisaldusega 20%, 40% glükoosi sisaldusega pärmi kasv suurendas. Suhkruta pärm kasvas halvasti.
    Staphylococcus sp kasv oli intensiivne antud tingimustel.Eriti intensiivselt ta kasvas sukrusisaldusega 20%, 40% glükoosi sisaldusega bakteri kasv pidurdas. Kuid võib öelda, et rakkud taluvad erinev suhkru sisaldus.
    Pseudomonas kasv ei olnud intensiivne antud tingimustel. Suhkruta bakter kasvas suurepäraselt, vaid suhkru sisaldusega suurendamisel kasvu ei toimunud.Kuid võib öelda, et rakkud taluvad erinev suhkru sisaldus. Graafikult on näha, et Pseudomonase kasv on eriti intensiivne suhkru sisalduga 0%.
    Temperatuuri mõju:
    Uuritavad bakterid (Pseudomonas sp „pruun „ Staphylococcus sp) ja pärm - Saccharomyces cerevisiae, kasvavad erinevatel temperatuuridel erinevalt.
    Staphylococcus sp optimaalne temperatuur on 20oC, selle temperatuuri juures oli kasv eriti suur, kuid 35oC ja 5 oC juures kasvas kultuur ka hästi. 50oC juures kultuur ei ole kasvanud Võib õelda, et see bakter on mesofiil, kuna tema temperatuuri optimum on vahemikus 20-35 oC
    Pseudomonas’e optimaalne temperatuur on 20oC, mille juures bakterite kasv oli kõige suurem. Kõrgematel temperatuuridel Pseudomonas’e kasvu eriti ei jälginud. Madalatel temperatuuridel bakter kasvas piisavalt hästi. Pseudomonase bakter kuulub psührofiili rühma, kuna bakterid hästi kasvasid 5 oC ja 20 oC juures.
    Saccharomyces cerevisiae optimaalsed temperatuurid kasvuks on 20 oC ja 35 oC. Madalal temperatuuril pagariparmi kultuur kasvas ka hästi, kuid 50 oC ei kasva üldse. Pagaripärm kuulub mesofiilide rühma, sest bakterite kasvu optimum oli 20-35 oC. Kuid ta hästi kasvas ka madalatel temperatuuridel.
    pH optimum:
    Migroorganismid rohkem eelistavad neutraalsed keskkonnad kasvamiseks ja arengumiseks, kuid on ka neid mikroobid , mis ka võivad areneda ja paljuneda happelises või leeliselises keskkonnades.
    Saccharomyces cerevisiae pH optimum on 7, järelikult parem ta areneb neutraalses keskkonnas, kuid ta hästi areneb aluselis keskkonnas. Saccharomyces cerevisiae suhtub alkalofiilide rühma.
    Staphylococcus sp optimaalne arenevuse keskkond on neutraalne ja tema pH optimum on 7. Kuna bakter arenes suhteliselt võrdselt happelises ja aluselises keskkonnas, siis ei saa öelda antud tulemuste järgi kas ta on atsidofiil, või alkalofiil. Kuid pH 9 juures Rhodococcuse lag-faas on kõige väiksema kestvusega, siis võib öelda et ta on alkalofiil
    Pseudomonas’e optimaalne arenevuse keskkond on neutraalne ja tema pH optimum on 7. Kuna bakter arenes suhteliselt võrdselt happelises ja aluselises keskkonnas, siis ei saa öelda antud tulemuste järgi kas ta on atsidofiil, või alkalofiil. Kuid pH 5 juures Rhodococcuse lag-faas on kõige väiksema kestvusega, siis võib öelda et ta on atsidofii.
    Ksenobiootikumide mõju:
    Staphylococcus sp bakterid kasvavad intensiivselt nii fenoolis kui ka küteõlis. Küteõlis vad natukene parem.
    Pseudomonas’e bakterite kasv on kõige intensiivne küteõlis, fenoolis ta kasvab pahasti.
    Saamuti pärmi kasv küteõlis oli ka hea, mida ei saa öelda fenooli kohta, kus ta peamiselt ei kasvanud..
    Hapnikku vajadusel analüüsivad tüved:
    Pseudomonas on aeroob , kuna vedelsöötmes ta kasvas kõigis söötme ruumalas eriti ruumala pinnal.
    Staphylococcus sp anaeroob kuna vedelsöötmes ta kasvas kolvi põhjal.
    Pärm on fakultatiivne anaeroob.
    Kokkuvõte
    Antud töös oli vaja analüüsida antud bakterite tüved, nende kasv ja arenemine erinevatel füüsikalis-keemiliste tingimustel.
    Oli tegemist Pseudomonasega, mis on gram-negatiivne aeroob. Ta ei talu soola ja suhkru sisaldut. Pseudomonas on psührofiili ja atsidofii. Erinevad ksenobiootikumid mõjusid erinevalt, fenooli juureolekul Pseudomonas praktiliselt ei kasvanud, kuid kütteõli juuresolekul ta kasvas hästi.
    Staphylococcus on gram-positiivne, anaeroob, mis ei talu ei soola ega suhkru sisaldust. Staphylococcus on mesofiil ja alkalofiil. Ksenobiootikumite juureolekul ta kasvas hästi.
    Pärm on gram-positiivne, fakultatiivne anaeroob, mis ei ole halofiil, kuid ta talub soola sisaldust. Väike suhkru kogus stimuleerib pärmi kasvut. Pärm on atsidofiil ja mesofiil; ksenobiootikumite juureolekul ta kasvas hästi.
  • Vasakule Paremale
    Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule #1 Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule #2 Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule #3 Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule #4 Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule #5 Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule #6 Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule #7 Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule #8 Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule #9 Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule #10
    Punktid 100 punkti Autor soovib selle materjali allalaadimise eest saada 100 punkti.
    Leheküljed ~ 10 lehte Lehekülgede arv dokumendis
    Aeg2010-12-16 Kuupäev, millal dokument üles laeti
    Allalaadimisi 98 laadimist Kokku alla laetud
    Kommentaarid 0 arvamust Teiste kasutajate poolt lisatud kommentaarid
    Autor Svetlana L Õppematerjali autor
    Biotehnoloogia 1 praksi protokoll

    Sarnased õppematerjalid

    Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule
    10
    doc

    Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide kasvule

    Tallinnatehnika Ülikool Biotehnoloogia õppetool Laboratoorse töö Füüsikalis-keemiliste tegurite mõju mikroorganismide nimetus: kasvule Üliõpilased: Robert Risti ja Luise Tiks Õppejõud: Tiina Õpperühm: YASB52 Kuupäev: 14.10.2013 Randla Tallinn 2014 SISSEJUHATUS Erinevate mikroorganismide kasvukiirus ja fermentatsioon sõltub keskkonnatingimustest (temperatuurist, pH-st, keskkonna koostisest jne). Enamik liike on neutrofiilid (eelistavad neutraalset keskkonda) ja mesofiilid (eelistavad temperatuurivahemikku 20-45 C. Leidub ka organisme, kes elavad äärmuslikes oludes ­ neid nimetatakse ekstremofiilideks. Null-kraadi lähedal kasvavad psührofiilsed, kuuma käes termofiilsed ja ekstreemselt kuumades tingimustes hüpertermofiilsed organismi

    Biotehnoloogia
    Biotehnoloogia labori arvestuse küsimused ja vastused
    10
    doc

    Biotehnoloogia labori arvestuse küsimused ja vastused

    reaktsiooniproduktide teke kasvutsoonis. Kasutatakse püstagarit või ­zelatiini. Kuumutatud ja jahutatud nõelaga võetud külvimaterjal viiakse kiiresti tardsöötmega katseklaasi. Külvinõel torgatakse läbi söötme peaaegu katseklaasi põhjani, jälgides, et nõel torgataks söötmesamba keskele. Pindkülv võimaldab uurida pindmiste kolooniate kuju ja suurust ning hinnata kvantitatiivselt uuritavate proovide aeroobsete mikroorganismide sisaldust. Külvi tegemisel kantakse uuritav materjal külviaasa või pipetiga tassil oleva agari pinnale, paotades ettevaatlikult Petri tassi kaant. Steriilset drigalski spaatlit ringikujuliselt liigutades aetakse materjal kogu söötme pinnale laiali. Et saada isoleeritud kolooniaid, tehakse sama spaatliga külvid teise ja kolmandasse tassi. Selleks võetakse spaatel esimesest tassist ning viiakse üle teise tassi. Spaatli külge jäänud materjal hõõrutakse laiali üle kogu tassi pinna.

    Biotehnoloogia
    Mikrobioloogia kordamiskusimused
    19
    doc

    Mikrobioloogia kordamiskusimused

    o Algoloogia -- uurib lihtsamaid loomi ja vetikaid Robert Hooke (1635--1703) oli teadlane, kes esimesena vaatles ja kirjeldas seeni. Ta oli üks esimesi mikroskoobi konstrueerijaid. Antony van Leeuwenhoeck (1632--1723) avastas bakterid, vere- ja spermarakud, mikroskoopilised ümarussid ja keraloomad. 1676. a avaldas ta raamatu ,,Looduse saladused", kus kirjeldas elusaid loomakesi vees, lihas jne. Louis Pasteur (1822--1895) tõi esimesena välja mikroorganismide osa ainete keemilisel muutumisel ja haigestumisel; leidis, et suhkur muudetakse piimhappeks spetsiaalsete bakterite toimel ja alkoholset käärimist kutsuvad esile pärmseened. R. Koch (1843--1910) tõi välja patogeensete (haigust põhjustavate) organismide osa nakkushaiguste kujunemisel. Ta tõestas seose siberi katku tekitaja (Bacillus anthracsis'e) ja selle haiguse vahel. Avastas tuberkuloosi tekitaja (Mycobacterium tuberculosis), koolera

    Mikrobioloogia
    Kordamisküsimused-juuretised ja mikroorganismid
    10
    odt

    Kordamisküsimused: juuretised ja mikroorganismid

    Kordamisküsimused Mikroobide elutegevust mõjutavad: füüsikokeemilised,keemilised,bioloogilised füüsikalised tegurid. 1. Keskkonna füüsikokeemilised tegurid, mis mõjutavad mikroorganismide elutegevust. Keskkonna veesisaldus: M.võivad arendeda ainult seal kus vaba vesi. Mikroobid ise sisaldavad kuni 85% vett, võtavad toitaineid ja väljutavad jääkaineid. Kasvuks vajava vee järgi jagunevad: hüdrofüüdid(armastavad vett), mesofüüdid(keskpärane veevajadus), kserofüüdid( taluvad ka kuivust). Paljud bakterid kuuluvad hüdrofüütide hulka. Vee kätte saadav osa, vee aktiivus: aw = n1 / n1 ­n2. N-lahutusunud aine ja lahusti moolide arv. Vee aktiivus on 0-1.0-

    Mikrobioloogia
    Mikrobioloogia kordamisküsimuste vastused 2012
    11
    doc

    Mikrobioloogia kordamisküsimuste vastused 2012

    MIKROBIOLOOGIA ÜLDKURSUSE KORDAMISKÜSIMUSED 1. Mikrobioloogia aine ja ajalooline areng Mikrobioloogia (micros -- väike; bios -- elu; logos -- teadus) -- teadus väga väikestest palja silmaga nähtamatutest organismidest, milliseid kutsutakse mikroorganismideks ehk mikroobideks. 2. Mikroorganismide taksonoomia (eukarüoodid, prokarüoodid; binaarne nimestik, mikroobi pesa, segakultuur, puhaskultuur) E. Chaton (1937. a) jaotas elusolendid rakulisel alusel prokarüootideks ja eukarüootideks. Prokarüoodid (eeltuumsed) - raku tsütoplasmas olevad organellid, kaasaarvatud DNA, ei ole eraldatud tsütoplasmast membraaniga. Puudub organiseeritud struktuuriga rakutuum. Siia riiki kuuluvad bakterid ja sini-rohe vetikad (ehk tsüanobakterid). Eukarüoodid

    Mikrobioloogia
    Mikrobioloogia üldkursuse eksamiküsimused
    20
    doc

    Mikrobioloogia üldkursuse eksamiküsimused

    R. Koch (1843—1910) tõi välja patogeensete (haigustpõhjustavate) organismide osa nakkushaiguste kujunemisel. M. W. Beijerinck (1851—1931) isoleeris ja avastas mügarbakterid. A. Fleming (1881—1955) – avastas penitsiliini. Friedrich Branell – avastas siberikatku tekitaja ja selle vahelise seose. Voldemar Gutman – Tartu Ülikooli professor, võttis kasutusele tuberkuliini. Valmistatud tuberkuloosi bakterite abil. 2. Mikroorganismide taksonoomia. Taksonoomia on teadus mikroobide klassifikatsioonist. Prokarüootide hulka kuuluvad bakterid ja sinivetikad. Eeltuumsed rakud, kus rakus olevad organismid ei ole eraldatud rakumembraaniga, vaid on vabad. DNA esineb tsütoplasmas vabalt. Eukarüoodid – algloomad, vetikad ( ka sini- rohevetikad ), mikroskoopilised seened, taimed, loomad. Päristuumsed, kus rakud on ümbritsetud rakumembraaniga. Viirused ― kuuluvad eraldi iseseisvasse riiki

    Mikrobioloogia
    Mikrobioloogia praktikumi vastused
    32
    odt

    Mikrobioloogia praktikumi vastused

    Madal temperatuur alandab aktiivsust ja sellega kasvukiirust. Kõrgetel temperatuuridel hakkama saamiseks on mikroobidel kohastumus – metalliioonide stabiliseeriv toime ja valkudes hüdrofoobsed aminohapped ja membraanis küllastunud rasvhapped. Madalatele temp. kohastujatel on membraanis suurem hulk küllastumata aminohapped. Arhedel termoresistentsed eeterlipiidid (elavad nt ülikõrge temp. piirkonnas, ekstreemse KK-ga pH). 2. Kuidas jaotatakse mikroorganismid temperatuuritundlikkuse alusel? psührofiil (5-15), psührotroof (20-30), mesofiil (30-40), termofiil (55-65), hüpertermofiil (90-100). 3. Kas temperatuuri klassifikatsioon peegeldab ka mikroobide elumust? Temperatuuri klassifikatsioon peegeldab selle mikroobi jaoks optimaalset temperatuuri, mille juures tema kasvukiirus on kõige kiirem ja talle soodsam. Mikroobide elumust sõltub lisaks temperatuurist

    Mikrobioloogia
    Mikroobifusioloogia
    147
    docx

    Mikroobifusioloogia

    omadustega. Näiteks söötmesse võib lisada fenooli, mida suudavad lagundada ainult fenooli lagundamisgeene omavad bakterid (nt Pseudomonas). Teistele on fenool toksiline. Lämmastiku fikseeerijatele tehakse sööde, millele ei lisata N- allikat. Sellisel söötmel suudavad kasvada ainult need bakterid, mis on võimelised fikseerima N2 õhust (nt Azotobacter). 1.4. Füüsikalis-keemilised tegurid, mis mõjutavad bakterite kasvu Bakterid on kohastunud elama teatud füüsikalis-keemiliste tingimustega. Näiteks hapniku kontsentratsioon keskkonnas, H-ioonide kontsentratsioon (pH), temperatuur ning vaba vee kättesaadavus on peamised tegurid, mis mõjutavad bakterite kasvu. Vastavalt nendele teguritele jaotatakse bakterid rühmadesse. 10 Bakterite kohanemine hapnikuga Hapnik on üks olulisemaid elemente bakterite koostises ning seda leidub peamiselt veena või molekulaarse hapnikuna, O2-na

    Mikroobifüsioloogia




    Meedia

    Kommentaarid (0)

    Kommentaarid sellele materjalile puuduvad. Ole esimene ja kommenteeri



    Sellel veebilehel kasutatakse küpsiseid. Kasutamist jätkates nõustute küpsiste ja veebilehe üldtingimustega Nõustun