3 Biokatalüüs
3.2 Proteolüütilise ensüümi aktiivsuse määramine
PROTEOLÜÜTILISED
ENSÜÜMID – (e
proteaasid , proteinaasid, peptidaasid) - ensüümid, mis katalüüsivad peptiidsideme hüdrolüüsi
reaktsiooni valkudes ja peptiidides, mille tulemusel tekivad madalam
molekulmassiga
peptiidid ja vabad
aminohapped .
PROTEOLÜÜS
– protsess, mille käigus proteaasid katalüüsivad
peptiidsideme hüdrolüüsi valkudes ja peptiidides
Proteaaside
funktsioonid: (füsioloogilised funktsioonid) - Toiduvalkude seedimine
- Kõrgreguleeritud ensüümireaktsioonide kaskaadid (vere hüübimise kaskaad )
Joonis 1. Endopeptidaasi eelistatud toimumispunkt.Piiratud proteolüüsi läbiviivad ensüümid: - Trüpsiin (R1= Lys, Arg; R2≠ Pro
- Kümotrüpsiin (R1=Tyr, Phe, Trp, Leu, Ile, Val; R2≠Pro)
- Pepsiin (R1=Phe, Leu jpt; R2≠Pro)
+ bakteriaalsed proteaasid (subtilisiin, savinaas,
alkalaas )
Tabel 1. Piiratud proteolüüsi läbiviivad ensüümidENDOPEPTIDAAS
– ensüüm, mis toimib polüpeptiidahele kesksetele
peptiidsidemetele (nt trüpsiin, kümotrüpsiin, pepsiin, alkalaas,
subtilisiin, savinaas)
EKSOPEPTIDAAS
– ensüüm, mis toimib polüpeptiidahele otsmistele
peptiidsidemetele. Nad lühendavad peptiide, vabastades ühekaupa C-
või N-terminaalseid
aminohappeid (nt karboksüpeptidaasid
R2=C-
terminaalne aminohape ja aminopeptidaasid
R1=N-terminaalne aminohape)
Ensüümi
toimimiseks optimaale pH väärtuse järgi eristatakse järgmisi
ensüüme:HAPU PROTEAAS – ensüüm, mis toimib, kui pH2,5
NEUTRAALNE PROTEAAS – ensüüm, mis toimib, kui pH7,2
LEELISPROTEAAS – ensüüm, mis toimib, kui pH9,0
Aktiivtsentri
ehitus ja sellest tulenev ensüümi toimemehhanism on
oluliseks proteaaside klassifikatsiooni aspektiks. Selle põhjal saab
välja tuua neli peamist rühma:
Seriinproteinaasid
Tioolproteinaasid
Aspartaatproteinaasid
Metallproteinaasid
Hüdrolüüsunud
peptiidsidemete hulk ei ole otseselt mõõdetav,
mistõttu avaldatakse proteaaside aktiivsus valgu hüdrolüüsil
vabanevate produktide (amh-e ja peptiidide hulga) kaudu:
ENSÜÜMI PROTEOLÜÜTILISE AKTIIVSUSE ÜHIK:
1 μkat- ensüümi hulk, mis põhjustab 1 μmooli peptiidsideme hüdrolüüsi/ 1 μmooli aminohapete vabanemisel 1 sekundi vältel 30°C juures
Tabel 2. Ensüümi proteolüütilise aktiivsuse ühik
Uuritavad preparaadid erinevad substraadispetsiifilisuse ja optimaalse pH
väärtuse poolest:
Proteaasi preparaat ja vajalik pH
Substraat , mida kasutatakse proteaasi aktiivsuse määramisel
NEUTRAALSED JA ALUSELISED PROTEAASID
Kaseiin : piima põhivalk, mis koostiselt fosfoproteiin. Kaseiini molekulid on väga hüdrofoobsed, kuid kaseiini Na-sool hüdrofiilne
Objektiivseks hindamiseks tuleb jälgida HÜDROLÜÜSI ALGSTAADIUMIT:
- Valgu polüpeptiidahelas katkevad üksikud peptiidsidemed
- Reaktsioonisegu sisaldab pika ahelaga peptiide
- Märgatav osa valgust on hüdrolüüsumata
- Tekkinud on vähesel määral vabu amh-d ja madalmolekulaarseid peptiide
Tabel 3. Neutraalsete ja aluseliste proteaaside toimimise tingimused
Proteaasi
aktiivsuse määramise põhineb:
kaseiini hüdrolüüsil uuritava proteaasi toimel
TKÄ-ga mittesadenevate hüdrolüüsiproduktide sisalduse määrmine spektrofotomeetrilisel meetodil
Miks?
- Tervikvalkude ja kõrgmolekulaarsed peptiidid, mille Mr > 10 000, sadestuvad lahusest TKÄ toimel
- TKÄ inaktiveerib ensüümi ja peatab edasise hüdrolüüsi
- Sademe eraldamise järel jäävad lahusesse vabad amh-d ja madalmolekulaarsed peptiidid, mille kontsentratsiooni saab kaudselt iseloomustada aromaatset tuuma sisaldavate amh-te sisalduse alusel
Aromaatset
tuuma sisaldavad aminohapped: Need amh-d omavad neeldumismaksimume UV-piirkonnas lainepikkustel 270-280 nm. Seetõttu spektrofotomeetriliselt hõlpsasti detekteeritavad.
Tyr (türosiin)
Trp (trüptofaan)
Phe (fenüülalaniin)
Kaseiini
hüdrolüüsi produktide sisaldust väjendatakse türosiini
kontsentratsioonina mg/ml või μmol/ml (1 μmol= 181 μg=0,181
mg).
Kui
kasutada kaliibrimissirget A vs CTyr leitakse absorbtsiooni väärtuste järgi türosiini kontsentratsioon
kindlatel aegadel reaktsioonisegust võetud proovides.
Joonis 2. Aromaatset tuuma sisaldavate amh-te neeldumisspektrid
3.2.2 Töö käik
ENSÜÜMPREPARAADIST
TÖÖLAHUSE VALMISTAMINE:
Valmista uuritavast protaasi preparaadist (ALKALAAS) ensüümile sobiva pH väärtusega puhvris lahus.
NB!
Ensüümi kontsentratsioon olgu vahemikus 1-5 mg/ml
Kooskõlasta juhendajaga:
- Alkalaasile sobiv puhver Boraatpuhver, pH= 8,4
- Lahuse täpne maht 5 ml
- Alkalaasi kontsentratsioon lahuses 1,66 mg/ml
Arvuta ensüümpreparaadi kaaluklaasi vajalik kogus ensüümpreparaati (analüütiline kaal):
Kaalu sobiva suurusega kaaluklaasi vajalik kogus (8,3 mg) alkalaasi.
Vii kadudeta (kvalitatiivselt) preparaat lahuse valmistamiseks sobivasse anumasse (gradueeritud katseklaas ).
Lisa väike kogus puhverlahust ja sega klaaspulgaga minutit kuni alkalaasi lahustumiseni.
NB!
Selget lahust ei teki, sest preparaadid sisaldava täiteainet!
Samas suured klimbid peavad olema kadunud!
Täida klaas puhverlahusega etteantud mahuni ja loksuta läbi, et ensüümi kontsentratsioon lahuses ühtlustuks.
ENSÜÜMREAKTSIOONI
(KASEIINI HÜDROLÜÜSI) LÄBIVIIMINE:
Võta 50 ml mahuga suur katseklaas.
Pipeteeri 25 ml 2%-list kaseiini lahust. (Kaseiin on substraadiks )
NB!
pH peab olema reguleeritud ensüümile sobiva väärtusega!
Kata klaas korgiga ja aseta vesitermostaati 30°C juures 5-10 minutiks soojenema.
Võta 4 kuiva normaalmõõdus (20 ml) katseklaasi. Nummerda katseklaasid!
Pipeteeri igaühte 3 ml 5%-list TKÄ lahust.
Kui kaseiini lahus on temperatuurini 30°C soojenenud, alusta elnsüümreaktsiooniga- KASEIINI HÜDROLÜÜSIGA!
NB!
Fikseeri stopperiga reaktsiooni algusaeg!
Pipeteeri kaseiini juurde 1 ml valmistatud alkalaasi lahust.
Loksuta reaktsioonisegu kiiresti läbi ja aseta tagasi termostaati.
Võta kuiva pipetiga võimalikult kiiresti 3 ml reaktsioonisegu:
Vii reaktsioonisegu katseklaasi A, mis sisaldab 5%-list TKÄ-d. Tegu on 0-prooviga!
Loksuta klaasi sisu hoolega. NB! Ära mikserda!
Peale proovi võtmist aeta reaktsiooniseguga katseklaas termostaati.
Kui on möödas täpselt 5 minutit, võta sama pipetiga 3 ml reaktsioonisegu ja pane see katseklaasi B.
Korda sama katseklaaside C ja D-ga.
Võta katseklaas termostaadist välja.
REAKTSIOONIPRODUKTIDE
SISALDUSE MÄÄRAMINE JA AKTIIVSUSE ARVUTAMINE:
Jäta katseklaasid 10- 15 minutiks seisma, et sade saaks täielikult formeeruda
Selle aja jooksul pane valmis 4 puhast ja kuiva katseklaasi:
Varusta need sobivate väikeste plastlehtritega.
Filtri proovid (milles sade põhja settinud) kuivadesse katseklaasidesse:
- Filtrile jäänud sade pole vajalik
- Filtraadid peavad olema selged. Kui hägused, tuleb uuesti filtreerida.
SPEKTROFOTOMEETRIA OSA:
Määra spektrofotomeetril 4 (erineval ajal reaktsioonisegust võetud) proovi optilise tiheduse väärtused lainepikkusel
Kasuta 1 cm läbimõõduga kvartsküvette.
Leia kaliibrimisgraafikult vastavalt proovide optilise tiheduse väärtusele D280 neis sisalduva türosiini kontsentratsioon (mg/ml või μmol/ml)
- KATSEKLAAS A: 0,340
- KATSEKLAAS B: 0,373
- KATSEKLAAS C: 0,485
- KATSEKLAAS D: 0,596
Koosta graafik katseandmete alusel.
Mõõdetud optilise tiheduse väärtus
Vastav türosiini kontsentratsiooni väärtus
0,340
0,0540
0,373
0,0595
0,485
0,0765
0,596
0,0949
Tabel 4. Mõõdetud optilised tihedused ja nendele vastavad türosiini kontsentratsioonide väärtused
Sellele
tabelile vastab graafik:
Joonis 3. Optilist tiheduse ja türosiini kontsentratsiooni vahelist sõltuvust kajastav graafik
Graafik
väljendab türosiini kontsentratsiooni ja reaktsiooni kestvuse vahelist sõltuvust:
Joonis 4. Türosiini kontsentratsiooni ja reaktsiooni kestvuse vahelist sõltuvust kajastav graafik
Excelisse
sisestasin tabeli:
Aeg (min)
0
5
10
15
C [Tyr]
0,054
0,0595
0,0765
0,0949
Tabel 5. Aja ja C[Tyr] vahelist sõltuvust väljendav tabel
ARVUTUSED:
kus
– türosiini
kontsentratsiooni muutus valitud ajavaheikus (mg/ml)
– hüdrolüüsi
kestus st valitud ajavahemik (s)
– reaktsioonisegu
(substraat+ensüüm) üldmaht (ml)
– valmistatud
alkalaasilahuse
üldmaht (ml)
2
– TKÄ lahusest tingitud proovi lahjendus (3 ml⟹
6
ml, seega L=2)
– alkalaasi
maht hüdrolüüsisegus (ml)
g
– alkalaasi
graanulite kaalutis (g)
181
– türosiini molekulmass
Leian
alkalaasi
proteolüütilise aktiivsuse A (μkat/g):
3.2.3 Kokkuvõte
ja järeldused
Uuritavaks
proteaasiks oli alkalaas, mille aktiivsuseks 30°C ja 8,4 pH
väärtuse juures oli 3,12 .
Kuna
proovid on reaktsioonisegust võetud kaseiini hüdrolüüsi protsessi
algfaasis, mil produktide kontsentratsiooni ja aja vahel valitseb
lineaarne sõltuvus , siis peavad kõik neli punkti katse korrektse
läbiviimise puhul langema sirgel. Sirge ei läbi
koordinaatide alguspunkti, sest kaseiin sisaldab vähesel määral
TKÄ-ga mittesadenevaid komponente ja seetõttu ka 0- proov sisaldab
veidi türosiini. Põhjus, miks minu graafik pole lineaarne, võib
peituda ebaselgetes lahustes: filtreerisin oma lahuseid 3-4 korda
ning lõpetasin siis, sest vastasel juhul poleks enam olnud
mõõtmistulemusteks materjali jätkunud. Siinkohal tuleb tunnistada,
et minu filtrimisoskused võiksid olla tunduvalt paremad. Arvestada
võib ka ajafaktorit: nagu eespool selgus, peab graafik olema
lineaarne produktide kontsentratsioonide ja aja lineaarse sõltuvuse
tõttu; ilmselt ei tegutsenud ma piisavalt kiiresti ning aeg ei ole konstantne (täpselt 5, 10, 15... minutit).
Kõik kommentaarid