Teooria.Glukoosisisalduse kvantitatiivseks maaramiseks bioloogilistes
vedelikes kasutatakse laialdaselt ensumaatilist meetodit, mis pohineb
kahe ensuumiglukoosi oksudaasi (GOD) ja peroksudaasi (POD)
kasutamisel . Tanu GOD-i substraadispetsiifilisele b, D-glukoosi
suhtes voimaldab see meetod maarata glukoosisisaldust ka teiste
taandavate suhkrute juuresolekul.
GOD kujutab endast liitvalku- flavoproteiini, sisaldades proteetilise
grupina FAD, mis toimub kui koensuum. Ta oksudeerib glukoos
glukoonhappeks ja tekib
viimasega ekvimolaarses koguses
vesinikperoksiidi.
+O2
(GOD
FAD->FADH2)+H2O
COOH-(HCOH)4-
CH2OH +H2O2
POD on koostiselt liitvalk – kromoproteiin, mis sisaldab
prosteetilise ruhma heemi. POD kataluusib
spetsiifiliste substraatide
oksudeerumist. Reaktsiooni pohimotteline skeem on sellinne:
POD
Taandatud
substraat +H2O2 Oksudeeritud substraat + 2H2O
(varviline)
Kaesolevas
toos kasutatakse POD substraadina
kaaliumheksatsuanoferraat(II) POD kataluusib selles Fe2+
oksudatsiooni Fe3+ -ks. Millega kaasnevalt toimub H2O2
redutseerimine veeks. Tekkiv kaaliumtsuanoferraat(III) annab lahusele kollase
varvuse ja on detekteeritav lainepikkusel 410 nm.
Reaktsioon kulgeb
happelises keskkonnas.
POD
2Fe2+ +H2O2 +2H+ 2Fe3+ +2H2O
Too kaik.Tooreaktiivi koostis.25 ml.
- 2,5 mg glukoosi oksudaasi
- 1,5 mg peroksudaasi
- 16,6 ml 0,2 M fosfaatpuhvrit, pH=6,0
- K-heksatsuanoferraat(II) 0,1%-list lahust sellises koguses, mis on vajalik kolvi vaba mahu taitmiseks kuni kaelal oleva margini.
Uuritav proov .Kaalusin analuutilisel kaaludel kaaluklaasi 0,1019 g
mett ,
viin teda
kvantitatiivselt 25 ml mootekolbi. Tegin seda kuuma dest. Veega, mida
lisasin vaikeste portsionitega 3 korda kaaluklaasi, klaasi sisu
segasin vaikese klaaspulgaga ja tekkinud lahus valasin lahtri abil
mootekolbi. Taidsin ca 1/3 kolvi mahust kuuma dest. veega ja kolbi
hoidsin veevannis veel20 min, aeg-ajalt loksutasin.
Parast jahutasin
toatemperatuurini.
Glukoosilahuste valmistamine kaliibrimisgraafiku koostamiseks .Glukoosi standartlahust valmistasin 1,0 mg/ml glukoosi konts.
Lahusest. Valmistasin kolm lahjendust, mille glukoosi konts. On
vastavalt 0,25 mg/ml, 0,125 mg/ml ja 0,062 mg/ml. Lahjenduste
valmistamiseks votsin kolm puhast katseklaasi, kuhu pipeti abil
mootsin eelnevalt valjaarvutatud kogus glukoosi standartlahust ja
lisasin dest. vett margini. Katseklaasi sulasin korgiga ja hoolikalt
loksutasin.
Reaktsiooni labiviimine. Katseklaas nr.1: Pipeteerisin 1 ml distileeritud
vett.(kontrollproov)
Katseklaasid nr.2,3: Pipeteerisin 1 ml uuritavat lahust
(paralleelproovid)
Katseklaas nr.4: Pipeteerisin 1 ml glukoosisisaldus 0,25 mg/ml
kontsentratsiooniga .
Katseklaas nr.5: Pipeteerisin 1 ml glukoosisisaldus 0,125
mg/ml kontsentratsiooniga.
Katseklaas nr.6: Pipeteerisin 1 ml glukoosisisaldus 0,062
mg/ml kontsentratsiooniga.
Igasse katseklaasi pipiteerin 3 ml tooreaktiivi ja loksutan kohe, et
saavutada uhtlast kontsentratsiooni. Katseklaasid hoian 20 min
toatemperatuuril. Reaktsioonide tulemused varvivad glukoosi
sisaldavad
lahused tekkiva K-heksatsuanoferraat(III) toimel
kollaseks. (Ei ole
paris margatav).
Spektrofotomeetril moodan leinepikkusel 410 nm lahuse optilise
tiheduse vaartust, kasutades vordluslahusena destileeritud vett.
Katseklaas nr.1: 0,061
Katseklaas nr.2: 0,141-0,061=0,08
Katseklaas nr.3: 0,141-0,061=0,08
Katseklaas nr.4: 0,200-0,061=0,139
Katseklaas nr.5: 0,125-0,061=0,064
Katseklaas nr.6: 0,090-0,061=0,029
Kalibrimisgraafik.C= 0,08mg/ml V2= 1 ml
V1= 4 ml L=1,0 mg/ml
G=0,1019 g W=15%
X=C*V1*L*0,001*100/V2*G(1-W)=0,08*4*1*0,001*100/1*0,1019*0,85=0,369
Tulemuste analuus:Internetist
leidsin, et
mesi sisaldab umbes 36% glukoosi minu tulemus on 36,9%. Sellest selgud, et
minu tulemus on
oige ja analuus on
labi viidud korrektselt.
Kõik kommentaarid