- UV-detektor - Fluorestsentsdetektor - Massispektromeetriline detektor - Amperomeetriline detektor - Konduktomeetriline detektor Praktiline osa Taustelektrolüüdiks on 138 mM NaOH (kõrge pH jaoks), 40 mM maleiinhape (UV- kiirgust neelav komponent), 5 mM 1-tetradetsüül-3-metüülimidasooliumkloriid (pindaktiivne komponent), pH=12,7. Taustelektrolüüti võeti 700 μl (igasse neljast viaalist). - 700 μl taustelektrolüüdilahust nelja viaali (ühega täidetakse kapillaar, kahte lähebad kapillaari otsad ning viimasele lisame uuritavad ained); - 100 μl analüüdilahust neljandasse viaali o 100 μl ainet 1 (äädikhape) o 100 μl ainet 2 o 100 μl ainet 4 (nikotiinamiid) Katse 1: uurisime antud analüüdisegu Katse 2: lisasime 5 μl nikotiinamiidi juurde Katse 3: lisasime 5 μl ainet 2 Järeldused: Aine 4 ei lahutunud, kuna on taustelektrolüüdilahusest kõrgema pKa-ga. Aine 2
ravimpreparaati kuni viis jaemüügipakendit ning kaasasolevate loomade tarbeks kuni viis erineva nimetusega ravimpreparaati, iga ravimpreparaati kuni kolm jaemüügipakendit. Ravimid peavad olema tootja pakendis. Jaemüügipakendi suurused on: · tahketel ravimvormidel kuni 100 ühikut, · pulbritel lahuse valmistamiseks 500 g, · homöopaatilistel graanulitel 50 g, · infusioonilahustel ja suukaudsetel lahustel 500 ml, · süstitavatel ravimvormidel 10 ampulli või viaali, · välispidistel ravimitel 200 ml või 200 g, · droogidel 100 g. Ilma Ravimiameti loata võib narkootilisi või psühhotroopseid aineid kaasa võtta ühe jaemüügipakendi suurusega kuni 20 ühikut ning ravimitega peab kaasas olema arsti, loomadel kasutatavate ravimite puhul veterinaararsti teatis ravimi vajaduse kohta või retsepti koopia. Taimekaitse vahendid Taimekaitse seisneb selles ,et hävitatakse kasulike taimedele ohustuvat kahju, näiteks
6) etüülatsetaat 7) destilleeritud vesi Katse kirjeldus: 1) 25 ml ümarkolbi lisada 0,51 ml tert-butüülakoholi 2) Veel lisada kolbi 0,50 ml bensoniriili 3) Segada reagendid kokku, nii et kogu tert-butüülalkohol lahustuks bensonitriilis 4) Kolb asetada ümarkolbi 5) Lisada tilkhaaval 10-15 mnuti jooksul 0,5 ml kontentreeritud väävelhapet-algul segu kollaka värvusega, mis muutus tasapisi oranziks 6) Eeemaldada jäävann 7) Kuumutada reaktsioonisegu 30 minutit ~50 0 C-võtta proov viaali TLC jaoks et teha kindlaks kas reaktsion toimus lõpuni.-segu värvus punkas-oranz 8) Pärast kuumutamist mitte magtnetsegajat välja lülitada-aja kokkuhoidmiseks 9) Täita keduklaas destileeritud vee ja jää seguga 1 10) Valada keeduklaasist kolbi 7-10 ml külma vett 11) Kasuatada spaatlit ning segada, hõõudes vastu kolvi seina-tekivad valged kristallid-minul rohkem sellised kollakad-valgedi 12) Eemaldada spaatliga magnetsegaja-magneetiline
3. Reaktiiv B: 0,5% CuSO4 . 5 H2O lahus 1% K-tsitraadis (lahus on valmis) 4. Folin-Ciocalteau reaktiiv Üliõpilasel valmistada 5. Reaktiiv C: Reaktiiv C on ebapüsiv, seetõttu tuleb ta valmistada ex tempore. Segage reaktiivid A ja B vahekorras 50:1. Selle katse tarvis tuleks valmistada vähemalt 10 ml reaktiivi C. TÖÖ KÄIK Valgulahuse lahjendusterea valmistamine standardlahusest (üldvalgu kontsentratsioon on 320 µg/ml): - võtke 4 viaali, nummerdage need ja pipeteerige igasse neist 1 ml destilleeritud vett; - lisage 1. viaali 1 ml standardlahust ja segage hoolikalt mikseril; - võtke 1. viaalist 1 ml lahust ja viige 2. viaali. Segage hoolikalt viaali sisu; - võtke 2. viaalist 1 ml lahust, viige see 3. viaali ja segage viaali sisu hoolikalt; - võtke 3. viaalist 1 ml lahust, viige see 4. viaali ja segage hoolikalt. Nii saitegi valgulahuse lahjenduste rea 1:2, 1:4, 1:8 ja 1:16.
1,25 ml 16. Patsiendile on määratud 200 mg amoksitsilliini (antibiootikum) suukaudseks manustamiseks. Osakonnas on lahus 250 mg/5 ml. Mitu milliliitrit lahust tuleb patsiendile manustada? 4 ml 17. Patsiendile on määratud 2,5 mg prometasiini suukaudseks manustamiseks. Osakonnas on lahus 5 mg/5 ml. Mitu milliliitrit lahust tuleb patsiendile manustada? 2,5 ml 18. Viaalis on penitsilliini kuivainena 1 000 000 ühikut. Kui palju lahust tuleb viaali lisada, et penitsilliini kontsentratsioon oleks 100 000 ühikut/milliliitris? 10 ml 19. Kui 1 000 000 ühikut penitsilliini lahustada 20 ml-s lahuses, on saadud lahuse kontsentratsioon 50 000 ühikut/milliliitris. Mitu milliliitrit saadud lahust tuleb manustada, et patsient saaks 10 000 ühikut ravimit? 0,2 20. Kui 1 000 000 ühikut penitsilliini lahustada 4 ml-s lahuses, siis on saadud lahuse kontsentratsioon ... ühikut/ml. 21
Tahkefaasi mikroesktraktsioon - Fiiber asetatakse nõela sisse => nõel viiakse proovi lahusesse ja fiiber surutakse nõelast välja. Tasakaalu saavutamisel tõmmatakse fiiber tagasi nõela sisse ja süstitakse gaaskromatograafi. Termiline desorbtsioon - proov kogutakse mingi adsorbendi sisse ja asetatakse torusse => toru kuumutatakse ja samal ajal puhutakse läbi toru kandegaasi, mis viib eralduvad ained lahutuskolonni. Headspace sisestamine - proov asetatakse viaali ja viaal suletakse, vajadusel kuumutatakse. Lenduvad komponendid difundeeruvad gaasifaasi. Taskaalu saavutamisel võetakse süstlaga proovi gaasifaasist. Split (jagamisega) - sisestuskrambris proov aurustub ja ainult väike osa jõuab lahutuskolonni, ainult ca 1/20 osa proovist sisestatakse kolonni. Solvendi piik on suhteliselt väike ja ei sega kromatogrammi interpreteerimist. Kasutatakse suurte kontside puhul.
Segada keerates ettevaatlikult topsi. 2. Soojendada sööde 37 °C vesivannis. Pipeteerida 15 ml tuubi 5 ml söödet ja 6 cm tassile 4 ml söödet. 3. Võtta külmast krüoviaaliga rakud (NIH3T3 – hiire embrüonaalsed fibroblastid) ja sulatada kiirelt (tegin seda käes), kuna külmutussegi sisaldab DMSO-t, mis on soojana rakkudele toksiline. 4. Järgmisena võtta 15 ml tuubist automaatpipetiga 0,5 ml sooja söödet ja lisada viaali, tõsta rakud 15 ml tuubi ringi. Fuugida rakud põhja 5 min 1000 rpm toatemperatuuril (kuna rakud on õrnad, kiirus ei tohi olla üle 1000 rpmi). 5. Pärast fuugimist tuleb tõmmata vaakumpumbaga sööde rakkudelt, kasutades Pasteuri pipeti ning steriilset otsikut. 6. Tuubile rakkudega lisada 0,5 ml söödet (6 cm tassilt), suspendeerida ning panna tagasi tuubist tassile. Teha tassiga 8-kujulisi liigutusi, et rakud tassil ühtlaselt jaotuksid ning asetada
aminohapped –vaid L-glutamiini, mis laguneb aja jooksul (kui sööde on pikka aega seisnud) tuleb seda juurde lisada. Rakkude sulatamine: NB! Rakkudega töötades on vaja tagada steriilsed tingimused ja kasutada aseptilist tehnikat, töötada puhta laminari all! Pipeteerisin 15 ml tuubi 5 ml söödet ja 6 cm tassile 4 ml söödet. Võtsin külmast krüoviaaliga NIH3T4 rakud ja sulatasin käes kiirelt (DMSO!) Lisasin viaali 0,5 ml sooja söödet ja tõstsin rakud 15 ml tuubi ringi. Fuugisin rakud põhja 5 min 1000 rpm toatemperatuuril (tegemis on õrna rakkudega, seega fuugimine peab olema madala kiirusega) Tõmmasin sööde vaakumpunbaga nii, et rakud jäid põhja Tassilt tuubile rakkudega lisasin 0,5 ml söödet, suspendeerisin ning panin tagasi tuubist tassile, ühtustasin rake ja panin tass CO2 inkubaatorisse, kus tingimused –
annaabi.ee 
