Kuigi mikroskoobis vaadates olid enamus lühikesed üksikud (agregeerumata) punased pulgad (etanool pesi kristallvioleti-joodi kompleksi välja), leidus ka osa lillaka tooniga rakke, kes olid samuti lühikesed üksikud pulgad. Täiendavalt tegin KOHi lüüsi testi, mis näitas, et tegemist on siiski gramnegatiivsete rakkudega (tekkis iseloomulik limajas konsistents). Tundmatu tüve liikuvuse uurimise jaoks kasutasin poolvedelat söödet (Hugh-Leifsoni sööde), millesse olin eelnevalt teinud pistekülvi. Külvijoone ümbrus söötmesambas oli häguseks muutnud ja liikuvust oli tuvastada. Flouretseeruvaid pigmente siderofoore tuvastamiseks kasutasin rauavaest KingB söödet. UVs ei tuvastanud fluorestseeruvate pigmentide kogunemist külvijoone ümber. 3. Süsinikuallikad Tegin joonkülvi Simmonsi agarile tsitraadi kasutamise tuvastamiseks. Agaril esines kasv ja indikaatorvärv broomtümoolsinine muutus rohelisest siniseks
andmebaasis olevate tuntud tüvede omadustega. 4. Millised geenid sobivad nn molekulaarseteks kronomeetriteks? housekeeping geenid ehk siis konseveerunud järjestused. 5. Millised kulturaalsed omadused on abiks mikroobide indentifitseerimisel? Koloonia kuju, suurus, värvus, konsistents, pind, läbilõige. 6. Kuidas on võimalik testuda kultuuris liikuvust ja endospooride esinemist? Liikuvus – ripptilgas. Hugh-Leifsoni sööde/süsivesikute kasutamise põhisööde – tehakse pistekülv. Endospooride esinemine – külvatakse toitepuljongiga katseklaasi, inkubeerida 80 kraadi juures ja inkubeerida termostaadis, et spoorid idaneksid. Teha väljakülv R2A agarile ja sealt omakorda preparaat. 7. Kuidas testitakse suhkrute kasutamist? O/F testiga. 8. Mis on käärimine? Orgaaniliste ühendite lagundamine anaeroobses tingimuses 9
annaabi.ee 
