negatiivne, kuid mõne aja möödudes hakkas aeglaselt mulle ilmuma (küll vähe). Samuti tundus esmapilgul, et trüptofanaasne aktiivsus puudub minu uuritaval mikroobil. Siiski hakkas vaikselt tekkima veekihile õrnalt punakas alkoholkiht, kuigi see oli väga nõrk. Seega ei osanud täpselt hinnata, kas on olemas trüptofanaas või mitte. Indooltesti tuleks korrata, et veenduda täiesti ensüümi olemasolus. Minu tundmatul tüvel ei tuvastanud amülaasi, proteaasi ega kaseiini. -glükosidaas (eskuliin) ja -galaktosidaas andsid positiivse tulemuse. Arginiini dihüdrolaas, ureaas ja DNaasi testid olid negatiivsed. 5. kasv temperatuuril, NaCl kontsentratsioonidel ja pH-l 37 °C juures kasv puudus täielikult, kuid 42 °C juures esines. Maksimaalne soolataluvus oli 7% juures, kuid eelistas (kõige tugevam kasv) 0% juures kasvada. Kõige nõrgem kasv oli pH 3 juures ja tugevaim alates pH 9-st kuni 11-ni. 6. 16S rRNA geeni järjestus
korda lahjema kontsentratsiooniga Fraseri puljongis (½ Fraser) ja teiseks etapiks on inkubeerimine täiskontsentratsiooniga (full-strenght) Fraseri puljongis (tabel 3.8). Listeria spp. isoleerimiseks soovitab ISO-meetod kasutada kahte selektiivagarit (Oxford ja Palcam), kusjuures L. monocytogenes omab mõlemal söötmel tüüpilisi kolooniaid (tabel 3.8). Mõlemad söötmed sisaldavad antibiootikume ja liitium- kloriidi selektiivsete agentidena ning eskuliin/raud(III) rauda diagnostilise süstee- mina. Palcam sisaldab D-mannitooli kombineerituna fenoolpunasega, mis võimal- dab listeeriatest eraldada eneterokokke ja stafülokokke. Kahtlustatavad kolooniad peaks allutama kontrolltestidele, milleks on suhkrute fermentatsioon (ksüloos ja ramnoos) ning katalaasi ja beeta hemolüsiini produktsioon. Viimasena teostatakse CAMP-test. Tabel 3.8. Söötmed Listeria spp. isoleerimiseks
annaabi.ee 
