fragmendid. Sildamplifikatsiooni tulemusena tekivad Flow-Cell põhja identse järjestustega DNA klastrid Sekveneerimiseks kasutatakse eemaldatava floresentsiga terminaatnukleotiide ja vastavat DNA polümeraasi. Ühe sekveneerimise tsükli kohta liidetakse üks komplementaarne nukleotiid, loetakse ära sellega seotud fluorestsentsmärge 8 ning siis eemaldatakse antud fluorofoor ja blokaatorgrupp. SOLID tehnoloogia põhineb sünkroonsetes ligeerimistsüklites. SOLID tehnoloogia kasutab DNA amplifitseerimises emulsioon- PCR meetodit. DNA fragmentide raamatukogu valmistatakse mikrokuulidel. PCR-i lõpptulemusena on iga kuulike kaetud tuhandete koopiatega algsest fragmendist. Seejärel vastavalt rakendusele asetatakse kuulid klaaspinnale. Fluorestsentsvalgus eraldub alles siis kui üksikahel ligeeritakse olemasoleva fragmendiga. SOLiD kasutab samuti nelja värviga fluorestsentsmarkeerimist, et kaardistada võimalike nukleotiidide kombinatsioone
Meetodi eeliseks on tema tundlikkus ja kiirus, sest radiomeetriliselt on võimalik avastada väga väikest 14CO2 hulka, mistõttu ka mükobakterite kasv on sedastatav varajases staadiumis. PUHASKULTUURI MIKROSKOOPIA. Kasvanud kolooniatest või kasvu andnud BACTEC vedelsöötmest valmistatakse preparaat, mis värvitakse Ziehl-Neelseni meetodil. IDENTIFIKATSIOON. Kasutatakse HAIN Lifescience GenoType meetodit, mis seisneb DNA fragmentide mitmekordses amplifitseerimises, mis võimaldab nii tuberkuloosi kompleksi kuuluvate kui ka paljude oportunistlike mükobakterite diferentseerimist. Analüüs tehakse mükobakterite puhaskultuurist. GenoType testribadel reastatud erinevad DNA fragmendid annavad uuritava DNA fragmentidega hübridiseerimisel värvimuutusreaktsiooni, mida näeme testribal vöötidena. Igale mükobakteri liigile on omane kindel teistest erinev vöötide kombinatsioon, mis võimaldab mükobaktereid identifitseerida liigi tasemini.